El extracto acuoso de Phyllanthus orbicularis K protege al ADN plasmídico del daño inducido por las radiaciones ultravioletas.

Autores/as

  • M Vernhes Departamento de Radiobiología, (CEADEN) (Habana, Cuba.)
  • M González-Pumariega Laboratorio de Genética Toxicológica, Departamento de Biología Vegetal, Universidad de la Habana, (Habana, Cuba)
  • A Passaglia Departamento de Microbiologia, Instituto de Ciências Biomédicas, Universidade de São Paulo, (São Paulo, SP, Brazil)
  • FC Martins Departamento de Microbiologia, Instituto de Ciências Biomédicas, Universidade de São Paulo, (São Paulo, SP, Brazil)
  • A Sánchez-Lamar Departamento de Radiobiología, (CEADEN) (Habana, Cuba.)

Palabras clave:

Phyllanthus Orbicularis, UV, dímero de pirimidina, extracto vegetal, fotoprotección

Resumen

Objetivo: Evaluar el efecto protector del extracto acuoso de Phyllanthus orbicularis, K ante el daño inducido por las radiaciones UVB y UVC.

Material y métodos: Se empleó el ensayo con ADN plasmídico (pBluescript SK II) libre de célula. Se evaluó la capacidad del extracto acuoso de P. orbicularis de inducir roturas de cadenas en el plásmido, a las concentraciones 0,0001-2,0 mg/ml. Se realizaron estudios de protección del extracto frente a las radiaciones UVB y UVC a las concentraciones de 0,1-2,0 mg/ml. Se cuantificó la transmitancia del extracto frente ambos tipos de radiaciones.

Resultados: Ninguna de las concentraciones evaluadas resultó genotóxica en 30 min de exposición. Las concentraciones ≥ 1 mg/ml de P. Obicularis sí indujeron roturas de cadenas a tiempos mayores de evaluación. El extracto de P. Orbicularis protegió al ADN frente a las radiaciones UVB y UVC a concentraciones ≥ 0,1 mg/ml y 0,5 mg/ml respectivamente.

Conclusiones: En nuestras condiciones experimentales, el extracto acuoso de P. Orbicularis protege al ADN frente al daño inducido por las radiaciones UV.

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.

Citas

Rastogi RP, Richa, Kumar A, Tyagi MB, Sinha P. Molecular. mechanisms of ultraviolet radiation-induced DNA damage and repair. J Nucleic Acids. 2010; 32.

Besaratinia, Yoon J, Schroeder Ch, Bradforth SE, Cockburn 2. M, Pfeifer GP. Wavelength dependence of ultraviolet radiation-induced DNA damage as determined by laser irradiation suggests that cyclobutane pyrimidine dimers are the principal DNA lesions produced by terrestrial sunlight. FASEB J. 2011; 25: 1-13.

Rundhaug JE, Fischer SM. Molecular mechanisms of 3. mouse skin tumor promotion. Cancers. 2010; 2: 436-82.

Nishyori C, Hattori Y, Toyokuni S. Role of reactive oxygen 4. species in ski carcinogenesis. Antioxid Redox Sig. 2004; 6: 561-70.

Pattinson D, Davies M. Actions of ultraviolet light on 5. celular structure. Exs. 2004; 96: 131-57.

Nichols JA, Katiyar SK. Skin photoprotection by natural 6. polyphenols: Anti-inflammatory, anti-oxidant and DNA repair mechanisms. Arch Dermatol Res. 2010; 302 (2): 1-19.

Afaq F. Natural agents cellular and molecular mechanisms 7. of photoprotection. Arch Biochem Biophys. 2011; 508(2): 144–51.

Katiyar S. Green tea prevents non-melanoma skin cancer 8. by enhancing DNA repair. Arch Biochem Biophys. 2011; 508: 152-8.

Sánchez-Lamar A, Cozzi R, Cundari E, Fiore M, Ricordy 9. R, De Salvia R. Phyllanthus orbicularis aqueous extract: cytotoxic, genotoxic and antimutagenic effects in the CHO cell line. Toxicol Appl Pharmacol. 1999; 161: 231-9.

Ferrer M, Sánchez-Lamar A, Fuentes JL, Barbé J, Llagostera 10. M. Studies on antimutagenesis of Phyllantus orbicularis: mechanisms involved against aromatic amines. Mutat Res. 2001; 498: 99-105.

Ferrer M, Sánchez-Lamar A, Fuentes JL, Barbé J, Llagostera 11. M. Antimutagenic mechanisms of Phyllanthus orbicularis when hydrogen peroxide is tested using Salmonella assay. Mutat Res. 2002; 4004(52): 1–4.

Ferrer D. Modelación in silito de las reacciones de captura 12. del radical hidroxilo a partir de los compuestos 2,4 diterbutilfenol y 2,6 disec butilfenol [Tabajo de Diploma]. Ciudad de la Habana. Universidad de La Habana; 2008.

Alonso A, Fuentes JL, Sánchez-Lamar A, LLagistera M. 13. Antimutagenic effect of Phyllanthus orbicularis against γ-radiation. Lat Am J Pharm. 2010; 29(1): 1-5

Cadet J, Douki T, Gasparutto D, Ravanat JL. Oxidative 14. damage to DNA: formation, measurement and biochemical features. Mut Res. 2003; 531: 5–23.

Russo A, Cardile V, Lombardo L, Vanilla L, Acquaviva R. 15. Genistin inhibits UV light induced plasmid DNA damage and cell growth in human melanonma cells. J Nutr Biochesm. 2006; 17: 103-8.

Geng J, Yu SB, Wang X, Shen P, Zhou P, Chen XD. Protective 16. action of bacterial melanin against DNA damage in full UV spectrums by a sensitive plasmid-based non cellular system. J Biochem Pioph Meth. 2008; 70: 1151-5.

Del Barrio G, Parra F. Evaluation of the antiviral activity 17. of an aqueous extract from Phyllanthus orbicularis. J ethnopharmacol. 2000; 72: 317-22.

Alting-Mees MA, Short JM. pBluescript II: gene mapping 18. vectors. Nucleic Acids Res. 1989; 17(22): 9494.

Wang SQ, Balagula Y, Osterwalder U. Photoprotection: 19. current and future technologies. Dermatol ther. 2010; 23: 31–47.

Alonso A, Fuentes JL, Prieto E, Sánchez-Lamar A, Ferrer 20. M, Llagostera M. Antigenotoxic effect of the aqueos extract of Phyllanthus orbicularis HBK in γ irradiated Escherichia coli cells. Recent Progress in medicinal plants. Phytotherapeutic. 2005; 10: 15-23.

Gutiérrez Y, Miranda M, del Barrio G, Varona N, Mayoral 21. JL. Evaluación farmacognóstica y fitoquímica preliminar de Phyllanthus orbicularis. Rev Cuba Farm. 2000; 34: 56-62.

Álvarez AL, del Barrio G, Kouri V, Martínez PA, Suárez B, 22. Parra F. In vitro anti-herpetic activity of an aqueous extract from the plant Phyllanthus orbicularis. Phytomedicine. 2009; 16: 960-6.

Ferguson L. Inhibitors of topoisomerse II enzymes : a 23. unique group of enviromental mutagens and carcinogens. Mut Res. 1998; 400: 271-8.

Traore F, Gasquet M, Laget M, Guirad H, DiGiorgo C, 24. Azas N, et al. Toxicity and genotoxicity of antimalarial alkaloid rich extracts derived from Mitragyna inermis and Nauclea latifolia. Phytotheraphy Research. 2000; 14(8): 608-11.

Sanyal R, Darroudi F, Parzefall W, Nagao M, Knasmuller 25. S. Inhibition of the genotoxic effects of heterocyclic amines in human derived hepatomacells by dietary bioantimutagens. Mutagenesis. 1997; 122: 97-303.

Marrot L, Belaidi J, Chaubo C, Meunier J, Pérez P, 26. Agapakis-Causse C. An in vitro strategy to evaluate the phototoxicity of solar UV at the molecular and cellular level: application to photoprotection assessment. Eur J Dermatol. 1998; 8(6): 403-12.

McVean M, Liebler DC. Prevention of DNA photodamage 27. by vitamin E compounds and sunscreens: roles of ultraviolet absorbance and cellular uptake. Mol Carcinog. 1999; 24: 169–76.

Kejnovsky E, Nejedly K, Kypr J. Factors influence resistance 28. of UV-irradiated DNA to the restriction endonuclease cleavage. Int J Biol Macromol. 2004; 34: 213-22.

Lin JY, Selim MA, Shea CR, Grichnik JM, Omar MM, 29. Monteiro-Riviere NA, et al. UV photoprotection by combination topical antioxidants vitamin C and vitamin E. J Am Acad Dermatol. 2003; 48(6): 866-74.

Placzek M, Gaube S, Kerkmann U, Gilbertz KP, Herzinger 30. T, Haen E, et al. Ultraviolet B-induced DNA damage in human epidermis is modified by the antioxidants ascorbic acid and d-a-tocopherol. J Invest Dermatol. 2005; 124 (2): 304-7.

Hada H, Hidema J, Maekawa M, Kumagai T. Higher 31. amounts of anthocyanins and UV-absorbing compounds effectively lowered CPD photorepair in purple rice (Oryza sativa L.). Plant Cell Environ. 2003; 26: 1691-701.

Valavanidis A, Vlachogianni T, Fiotakis C. 8-Hydroxy-32. 20-deoxyguanosine (8-OHdG): a critical biomarker of oxidative stress and carcinogenesis. J Environ Sci Health. 2009; 27:120–39.

Guang J, Yang L, Shun Zi J, Liu XL, Su-Zheng, L. UVB 33. induced oxidative strees uin human keratinocytes and protective effect of antioxidant agents. Radiat Environ Biophys. 2007; 46: 61-8.

Maia P, D Gianeti M, Kanashiro A, Lucisano Y, Gaspar L. 34. In vitro antioxidant and in vivo photoprotective effects o fan association of bioflavonoids with liposoluble vitamins. Photochem Photobiol. 2006; 82: 683-8.

Descargas

Publicado

2013-03-20

Cómo citar

1.
Vernhes M, González-Pumariega M, Passaglia A, Martins F, Sánchez-Lamar A. El extracto acuoso de Phyllanthus orbicularis K protege al ADN plasmídico del daño inducido por las radiaciones ultravioletas. Ars Pharm [Internet]. 20 de marzo de 2013 [citado 24 de abril de 2024];54(1):16-23. Disponible en: https://revistaseug.ugr.es/index.php/ars/article/view/4577

Número

Sección

Artículos Originales