Estudios microbiológicos y toxicológicos de Mitracarpus megapotamicus

Autores/as

  • Mirta Susana Toribio Cátedra de Farmacología. Facultad de Ciencias Veterinarias. Universidad Nacional de La Pampa (Argentina).
  • Andrea Silvina Pombar Cátedra de Farmacología. Facultad de Ciencias Veterinarias. Universidad Nacional de La Pampa (Argentina).
  • Susana Delia Oriani Cátedra de Microbiología. Facultad de Ciencias Veterinarias. Universidad Nacional de La Pampa (Argentina).
  • Ricardo Enrique Toso Cátedra de Farmacología. Facultad de Ciencias Veterinarias. Universidad Nacional de La Pampa (Argentina).
  • Jésica Gabriela Fernández Cátedra de Farmacología. Facultad de Ciencias Veterinarias. Universidad Nacional de La Pampa (Argentina).

Palabras clave:

Mitracarpus megapotamicus, Actividad antibacteriana, Toxicidad

Resumen

Objetivo: evaluar la actividad antimicrobiana y la toxicidad de extractos obtenidos de la especie vegetal Mitracarpus megapotamicus.

Material y Métodos: se determinó la concentración inhibitoria mínima mediante el método de dilución en agar del extracto metanólico. Se utilizó la técnica de difusión en agar para comprobar la persistencia de la actividad antimicrobiana en extracciones acetónicas y clorofórmicas. Los ensayos de toxicidad aguda y subaguda se llevaron a cabo en ratones utilizando una dosis única de 5.000 mg/kg y una dosis diaria durante 14 días de 1.250 mg/kg de extracto hidroalcohólico, respectivamente.

Resultados: La concentración inhibitoria mínima del extracto metanólico fue de 0,48 mg/ml para Streptococcus equi, Proteus mirabilis, Staphylococcus aureus, Staphylococcus epidermidis y de 0,96 mg/ml para Escherichia coli. La actividad antimicrobiana se manifestó también en las fracciones extractadas con acetona y cloroformo, frente a Staphylococcus aureus. El extracto hidroalcohólico no produjo cambios funcionales ni alteraciones histopatológicas en estudios de toxicidad aguda y subaguda en ratones.

Conclusión: Los resultados obtenidos permitirán proyectar estudios de identificación de compuestos y establecer futuros protocolos para determinar la eficacia en modelos in vivo.

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.

Citas

Denamiel G, Puigdevall T, Más J, Albarellos G, Gentilini E. Prevalencia y perfil de resistencia a betalactámicos en estafilococos de perros y gatos. In Vet. 2009;11(2):117-122.

Dye C, Scheele S, Dolin P, Pathania V, Raviglione MC. Global burden of tuberculosis: estimated incidence, prevalence and mortality by country. JAMA. 1999; 282:677-686.

Estévez RJ. Origen de las sustancias medicamentosas. En Botana LM, Landoni F, Martín Jiménez T: Farmacología terapéutica veterinaria. México. Mc Graw Hill-Interamericana. 2002. p. 3-19.

Toribio MS, Oriani DS, Toso RE, Fernández JG, Tortone CA. Extractos vegetales con actividad antimicrobiana frente a bacterias Gram negativo. Libro de resúmenes de la V Jornada de Ciencia y Técnica. Facultad de Ciencias Veterinarias. Universidad Nacional de La Pampa. La Pampa. Argentina; 2007. p. 9.

Toribio MS, Oriani DS, Toso RE, Tortone CA, Fernández JG. Suceptibilidad de Staphylococcus aureus a extractos vegetales obtenidos de plantas nativas y naturalizadas de la provincia de La Pampa, Argentina. Bol Latinoam Caribe Plant Med Aromáticas. 2007; 6(6):367-8.

Cabrera AL, Zardini EM. Manual de la flora de los alrededores de Buenos Aires. Argentina. Acme. 1993. p. 240-585.

Toursarkissian M. Plantas medicinales de la Argentina: sus nombres botánicos, vulgares, usos y distribución geográfica. Buenos Aires. Argentina. Hemisferio Sur. 1980. p. 112.

Bacigalupo NM. Flora del Valle de Lerma. Aportes botánicos de Salta. Herbario MCNS. Facultad de Ciencias Naturales. UNSa. 1996; 4(3):26-8.

Bauer AW, Kirby WM, Sherris JC, Truck M. Antibiotic suceptibility testing by a single disk method. Am J Clin Pathol. 1966; 45:493-6.

Olfert ED, Cross BM, Mc William A. Guide to the Care and use of experimental animals. Canadian Council on Animal Care. 1993 (1).

Souza Brito A. Manual de ensayos toxicológicos in vivo. Campinas, Brasil UNICAMP.1994. p.122.

Ramírez LS, Marín Castaño D. Methodologies for evaluating the in vitro antibacterial activity of natural compounds of plant origin. Scientia et Technica XV 2009; 42:263-267.

Fuertes CR, Alcarraz MR, Vidalón MT. Flavonoides y alcaloides de Lupinus ballianus sp Smith con actividad antibacteriana y antifúngica. Cienc invest. 1994; 1:12-6.

Domingo D, López Brea M. Plantas con acción antimicrobiana. Rev Esp Quimioterap. 2003; 16(4):385-93.

Mendonça-Filho RR. Bioactive phytocompounds: new approaches in the phytosciences. In: Ahmad I, Aqil F, Owas M. Phytomedicine: turning medicinal plants into drugs. Germany. 2006. p. 1-24.

Bertucci A, Haretche F, Olivaro C, Vásquez A. Prospección química del bosque de galería del río Uruguay. Rev bras farmacogn. 2008; 18(1):21-5.

Bertucci A, Olivaro C, Almeida Da Silva P, Daniela Ramos D, Cerdeiras MP, Vázquez A. Initial antimicrobial activity studies of plants of the riverside forests of the southern Uruguay River. Rev bras farmacogn. 2009; 19(1A):20-5.

Ncube NS, Afolayan AJ, Okoh AI. Assessment techniques of antimicrobial properties of natural compounds of plant origin: current methods and future trends. Afr J Biotechnol. 2008; 7(12):1797-806.

Arencibia Arrebola DF, Rosario Fernández LA, Suárez Fernández YE, Soroa Millán Y. Consideraciones importantes acerca de la cuarentena de ratas y ratones como biomodelos experimentales en toxicología. Revisión. Vet Arg XXVII. 2010; 271.

Zanetti GD, Manfron MP, Hoelzel SC, Pagliarin VP, Morel AF. Toxicidade aguda e atividade antibacteriana dos extratos de Tropaeolum majus L. Acta farm bonaer. 2003; 22(2):159-62.

Descargas

Publicado

2013-12-20

Cómo citar

1.
Toribio MS, Pombar AS, Oriani SD, Toso RE, Fernández JG. Estudios microbiológicos y toxicológicos de Mitracarpus megapotamicus. Ars Pharm [Internet]. 20 de diciembre de 2013 [citado 20 de abril de 2024];54(4):09-15. Disponible en: https://revistaseug.ugr.es/index.php/ars/article/view/4650

Número

Sección

Artículos Originales